Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/83378
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dc.contributor.authorContreras Salinas, Homero
dc.date.accessioned2021-10-02T20:50:24Z-
dc.date.available2021-10-02T20:50:24Z-
dc.date.issued2015-02-01
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/83378-
dc.description.abstractAntecedentes: El riñón es el principal órgano excretor y homeostático del cuerpo humano y cualquier proceso que resulte en la pérdida de las nefronas eventualmente progresará a una enfermedad renal crónica (ERC). Una manifestación común de la enfermedad renal crónica es la fibrosis renal, considerada como uno de los factores que desencadena una insuficiencia renal terminal, caracterizada por proliferación celular y un progresivo depósito de matriz extracelular (MEC) principalmente colágena I, III y fibronectina. La degradación de las proteínas de la MEC se lleva a cabo por enzimas proteolíticas denominadas metaloproteinasas de matriz (MMPs) que se encargan del remodelado de la matriz extracelular. Dentro de las MMPs, la MMP-8 puede escindir un amplio rango de sustratos, principalmente colágena tipo I y III. Por otra parte, la Terapia génica es una metodología novedosa que aborda la inserción de material genético en el interior de una célula diana mediante un vector con el objeto de modificar la dotación genética y con ello producir un cambio funcional. Dentro de los vectores más utilizados para la terapia génica se encuentran los adenovirus los cuales presentan varias ventajas sobre los otros vectores como son la facilidad de producción en el laboratorio y que pueden transducir gran cantidad de células. Objetivo general: Evaluar el efecto de una estrategia de terapia génica mediante la administración de Ad-MMP-8 en la regresión de la fibrosis renal en un modelo murino. Material y métodos: A ratas Wistar se les indujo fibrosis renal por medio de la administración con adenina 100 mg/Kg de peso al día mediante cánula orogástrica durante 4 semanas. el grupo control sano solamente recibió vehículo. Una vez establecida la fibrosis y previa anestesia, se administró en el riñón izquierdo 3X1011 PV/rata de adenovirus conteniendo el gen terapéutico MMP8 (Ad-MMP8) o el gen irrelevante GFP (Ad-GFP), otro grupo recibió solo el vehículo. Los animales fueron sacrificados a los 3, 7 y 14 días para la obtención de ambos riñones que fueron diseccionados para la realización de diferentes procedimientos: RT-PCR para el análisis de la expresión de los siguientes genes: Col-1a, TGF-ß1, a-SMA, CTGF, MMP-8, TGFß3, PAX2, IL-1, TNF-a, BMP-7, VEGF). Histología: (Tinción tricrómica de Masson (grado de fibrosis), Hematoxilina y Eosina (inflamación y necrosis), inmunohistoquímica (a-SMA) y ELISA para la determinación de MMP-8 en homogenado de tejido renal y en suero. Así como la obtención de muestras sanguíneas para determinación de pruebas de funcionalidad renal (Urea y creatinina). Resultados: Se estandarizó el modelo de fibrosis renal por nefropatía mediada por la administración de adenina durante 4 semanas donde se encontró un porcentaje de fibrosis del 20%± 4% estadísticamente significativo (p≤0.001) así como un aumento significativo en los niveles de urea y creatinina respecto a la administración de vehículo. También se estandarizó el envío del gen reportero de la “proteína verde fluorescente” (Ad-GFP) por isquemia-reperfusión de la vena renal del riñón izquierdo a 15 min dónde se determina que el porcentaje de transducción a través de la expresión del transgen es de 72.5 ± 5%. Intervención: Se encontró una reducción del porcentaje de fibrosis estadísticamente significativa entre los grupos de ratas tratadas con Ad-MMP-8, Ad-GFP y vehículo a los 14 días posttransducción siendo mayor en el riñón derecho que en el izquierdo. La medición de los niveles de la proteína MMP-8 mediante ELISA mostró que solamente se encontró MMP-8 en las ratas tratadas con Ad-MMP-8 en ambos riñones sin embargo, el trasgen únicamente fue encontrado en el riñón izquierdo de estos animales. En cuanto a las determinaciones de funcionalidad renal se encontró una tendencia no significativa a disminuir creatinina y urea el día 14 ADE+MMP8: BUN 41mg/dL, creatinina 0.4mg/dL en comparación con los grupos de ADENINA: En relación a la expresión génica se encontró una disminución en la expresión de genes profibrogénicos y proinflamatorios en ratas tratadas con MMP8 en comparación con el grupo control con fibrosis así como un aumento en la expresión de genes antifibrogénicos. Conclusiones: El envío de Ad-MMP8 al riñón izquierdo permite la expresión del transgen de la metaloproteinasa 8 con una reducción significativa de la fibrosis renal ocasionada por la administración de Adenina.
dc.description.tableofcontentsI. Consideraciones éticas y conflictos de interés II. Dedicatorias III. Agradecimientos IV. Índice general V. Índice de figuras VI. Índice de tablas VII. Lista de abreviaturas VIII. Resumen IX. Abstract 1. Marco teórico 1.1. Epidemiología de la enfermedad renal crónica 1.2. Riñón 1.3. Fibrosis renal 1.3.1. Iniciación 1.3.2. Activación 1.3.3. Ejecución y progresión 1.4. Moléculas implicadas en la fibrosis renal 1.4.1. Profibrogénicas 1.4.1.1. Actina de Musculo Liso Alfa 1.4.1.2. Factor de Crecimiento Trasformante Beta 1 1.4.1.3. Factor de Crecimiento del Tejido Conectivo 1.4.2. Antifibrogénicas 1.4.2.1. Proteína Morfogénica Ósea 7 1.4.3. ProInflamatorias 1.4.3.1. Factor de Necrosis Tumoral Alfa 1.4.3.2. Interleucina 1 1.4.4. Regeneración tisular 1.4.4.1. Paired Box 2 1.4.4.2. Factor de Crecimiento Endotelial Vascular 1.5. Colágena 1.5.1. Síntesis de colágena 1.5.2. Tipos de colágena 1.5.2.1. Colágena tipo I 1.5.2.2. Colágena tipo II 1.5.2.3. Colágena tipo III 1.6. Metaloproteinasas 1.6.1. Metaloproteinasa 8 1.7. Terapia génica 1.7.1. Vectores 1.7.1.1. Vectores no virales 1.7.1.2. Vectores Virales 1.7.1.2.1. Adenovirus 1.7.1.2.1.1. Adenovirus como vectores 1.8. Modelos de la enfermedad renal crónica y fibrosis 1.8.1. Obstrucción Uretral Unilateral (UUO) 1.8.2. Nefropatía mediada por ácido fólico 1.8.3. Nefrectomía parcial 1.8.4. Nefropatía mediada por adenina 1.9. Terapia génica experimental 2. Planteamiento del problema 3. Justificación 4. Pregunta de investigación 5. Hipótesis 6. Objetivos 6.1. Objetivos general 6.2. Objetivos específicos 7. Metodología 7.1. Tipo de estudio 7.2. Universo de estudio 7.3. Tamaño de muestra 7.4. Grupos de estudio 7.5. Cede 7.6. Criterios de selección 7.6.1. Criterios de inclusión 7.6.2. Criterios de exclusión 7.6.3. Criterios de eliminación 7.7. Análisis estadístico 8. Materiales y Métodos 8.1. Materiales 8.1.1. Rattus Norvegicus Albinus cepa Wistar 8.1.2. Adenina 8.1.3. Vectores adenovirales 8.2. Métodos 8.2.1. Modelo animal 8.2.2. Producción de vectores adenovirales 8.2.3. Envío del vector adenoviral 8.2.4. Sacrificio 8.2.5. Análisis de biodistribución 8.2.6. Determinación de pruebas de función renal 8.2.7. Estudios histológicos 8.2.8. Determinación de porcentaje de fibrosis renal 8.2.9. Extracción de RNA total 8.2.10. Retrotrascripción 8.2.11. qPCR 8.2.12. Análisis de expresión de genes por el método de 2ΔΔCT 8.2.13. ELISA MMP-8 9. Resultados 9.1. Efecto de la administración de adenina sobre la morfología del riñón 9.2. Efecto de la administración de adenina sobre la histología del riñón 9.3. Determinación del grado de fibrosis 9.4. Pruebas de función renal para la evaluación del modelo de adenina 9.5. Evaluación de la administración de adenovirus en ratas 9.6. Biodistribución del vector 9.7. Pruebas de funcionalidad renal 9.8. Análisis morfométrico 9.8.1. Evaluación del porcentaje de fibosis 9.8.1.1. Evaluación del porcentaje de fibrosis al día 3 9.8.1.2. Evaluación del porcentaje de fibrosis al día 7 9.8.1.3. Evaluación del porcentaje de fibrosis al día 14 9.9. Determinación de la expresión de la proteína hMMP-8 mediante ELISA. 9.10. Determinación de la presencia del transgen hMMP-8 mediante RTPCR 9.11. Análisis de expresión de proteinas profibrogénicas 9.11.1. Colágeno tipo 1 9.11.2. CTGF 9.11.3. TGF-b1 9.11.4. a-SMA 9.12. Análisis de expresión de proteinas anifibrogénicas 9.12.1. BMP-7 9.13. Análisis de expresión de proteinas proinflamatorias 9.13.1. TNF-a 9.13.2. IL-1 9.14. Análisis de expresión de moléculas de crecimiento celular 9.14.1. VEGF 9.14.2. Pax2 10. Discusión 11. Conclusiones 12. Perspectivas 13. Bibliografía
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectTerapia Genica
dc.subjectAdmmp8
dc.subjectRegresion De Fibrosis Renal
dc.subjectModelo Murino
dc.titleUTILIZACIÓN DE UNA ESTRATEGIA DE TERAPIA GÉNICA MEDIANTE Ad- MMP8 PARA INDUCIR REGRESIÓN DE LA FIBROSIS RENAL EN UN MODELO MURINO.
dc.typeTesis de Doctorado
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderContreras Salinas, Homero
dc.coverageGUADALAJARA, JALISCO
dc.type.conacytdoctoralThesis
dc.degree.nameDOCTORADO EN FARMACOLOGIA
dc.degree.departmentCUCS
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara
dc.degree.creatorDOCTOR EN FARMACOLOGIA
dc.contributor.directorArmendáriz Borunda, Juan
dc.contributor.codirectorSalazar Montes, Adriana María
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