Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/82756
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dc.contributor.advisorLópez López, Zaira Del Rocío
dc.contributor.advisorKnauth, Peter
dc.contributor.authorSalazar Zúñiga, Michelle Nicole
dc.date.accessioned2021-03-27T03:05:18Z-
dc.date.available2021-03-27T03:05:18Z-
dc.date.issued2020-05-14
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/82756-
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.description.abstractDeterminar el efecto citotoxicológico in vitro de los polisacáridos de cadena larga (tratados térmicamente) en suplementos alimenticios de Aloe vera.
dc.description.tableofcontentsÍNDICE Índice de figuras.............................................................................................................................. 4 Índice de tablas................................................................................................................................ 6 Antecedentes....................................................................................................................................... 8 Introducción ...................................................................................................................................... 11 Clasificación Botánica............................................................................................................... 11 Propiedades terapéuticas de A. vera.............................................................................................. 14 Estudios sobre actividad biológica de extractos crudos de A. vera............................................... 15 Estudios sobre actividad biológica de productos procesados de A. vera ...................................... 16 Procesos industriales usados para la deshidratación de productos naturales................................. 17 Influencia del calor en compuestos bioactivos.............................................................................. 19 Influencia del calor en polisacáridos............................................................................................. 21 Caracterización biológica de los polisacáridos de A. vera ............................................................ 23 Justificación....................................................................................................................................... 24 Hipótesis............................................................................................................................................ 24 Objetivo general................................................................................................................................ 25 Objetivos específicos .................................................................................................................... 25 Metodología ...................................................................................................................................... 25 1.1 Obtención y preparación de muestras ..................................................................................... 26 1.1.1 Obtención de muestras crudas.......................................................................................... 26 1.1.2 Deshidratación de muestras.............................................................................................. 26 1.1.3 Muestras deshidratadas e industriales.............................................................................. 27 1.2 Caracterización química de muestras deshidratadas e industriales......................................... 28 1.3 Microscopía (SEM)................................................................................................................. 28 1.4 Obtención de residuo insoluble en alcohol (AIR)................................................................... 29 1.5 Obtención de azúcares neutros................................................................................................ 30 1.5.1 Hidrólisis.......................................................................................................................... 30 1.5.2 Reducción y acetilación ................................................................................................... 31 1.5.3 Análisis por GC-FID ........................................................................................................ 31 1.5.4 Análisis de ácidos urónicos.............................................................................................. 32 1.5 Grado de metil esterificación de las pectinas (DME).............................................................. 33 1.6 Determinación del grado de acetilación del acemanano por RMN......................................... 34 1.7 Propiedades funcionales.......................................................................................................... 34 1.7.1 Hinchamiento (Swelling (SW))........................................................................................ 35 1.7.2 Capacidad de retención de agua (WRC) .......................................................................... 35 1.7.3 Capacidad de retención de aceite (FAC).......................................................................... 35 2 Estudios in vitro ......................................................................................................................... 36 2.1 Crecimiento celular................................................................................................................. 36 2.2 Condiciones de cultivo para HT29 (células humana adenocarcinoma colorrecteral) ............. 36 2.3 Preparación de muestras de A. vera ........................................................................................ 36 2.4 Viabilidad celular.................................................................................................................... 37 2.4.1 WST-1 .............................................................................................................................. 38 2.4.2 Técnica de Absorción de Rojo Neutro (NRU)................................................................. 38 2.4.3 Necrosis............................................................................................................................ 39 2.4.4 Azul de tripán o de tripano (trypan blue en inglés).......................................................... 39 3. Resultados..................................................................................................................................... 40 3.1 Rendimiento de muestras deshidratadas.................................................................................. 40 3.2 Viabilidad de la línea celular HT-29 frente a las muestras deshidratadas e industriales......... 40 3.2.1 HT-29 expuesta a A60...................................................................................................... 41 3.2.2 HT-29 expuesta a A60(b)................................................................................................. 42 3.2.3 HT-29 expuesta a A80...................................................................................................... 44 3.2.4 HT-29 expuesta a A100.................................................................................................... 45 3.2.5 HT-29 expuesta a ILL ...................................................................................................... 46 3.2.6 HT-29 expuesta a ILF ...................................................................................................... 48 3.2.7 HT-29 expuesta a muestras no deshidratadas sometidas a diferentes temperaturas......... 48 3.3 Morfología estructural de las muestras deshidratadas e industriales....................................... 50 3.3.1 SEM en muestras de A60, A80 y A100 ........................................................................... 50 3.3.2 SEM muestras ILF e ILL ................................................................................................. 51 3.3.3 Obtención del residuo insoluble en alcohol (AIR)........................................................... 52 3.3.4 Determinación de monosacáridos .................................................................................... 53 3.3.4.1 Determinación de monosacáridos en muestras deshidratadas....................................... 53 3.3.4.2 Análisis de azúcares en muestras de AIRs.................................................................... 54 3.3.5 Determinación del grado de metil esterificación.............................................................. 56 3.3.6 Determinación del grado de acetilación del acemanano por RMN.................................. 56 3.3.7 Determinación de las propiedades funcionales ................................................................ 58 3.3.7.1 Determinación de hinchamiento (Swelling, Sw)........................................................... 58 3.3.6.2 Determinación de la capacidad de retención (WRC) .................................................... 59 3.3.6.3 Determinación de la capacidad de retención de aceite (FAC)....................................... 59 3.4 HT-29 expuesta a los polisacáridos......................................................................................... 60 3.4.1 HT-29 expuesta a AA60................................................................................................... 60 3.4.2 HT-29 expuesta a AA80................................................................................................... 62 3.4.3 HT-29 expuesta a AA100................................................................................................. 64 3.4.4 HT-29 expuesta a AILF.................................................................................................... 66 4. Discusión....................................................................................................................................... 69 4.1 Rendimiento y modificaciones entre las muestras deshidratadas........................................... 69 4.2 Efecto celular frente a componentes modificados en el gel de A. vera................................... 69 4.3 Exposición a polisacáridos...................................................................................................... 71 Conclusiones..................................................................................................................................... 73 Referencias........................................................................................................................................ 74
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectEvaluacion Citotoxica De Polisacaridos
dc.subjectSuplementos Alimenticios
dc.subjectAloe Vera
dc.titleEvaluación citotóxica de polisacáridos en suplementos alimenticios de Aloe vera
dc.typeTesis de Maestria
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderSalazar Zúñiga, Michelle Nicole
dc.coverageOCOTLAN, JALISCO
dc.type.conacytmasterThesis-
dc.degree.nameMAESTRIA EN CIENCIAS BIOLOGICAS Y AGROPECUARIAS ORIENTACION BIOTECNOLOGIA-
dc.degree.departmentCUCIENEGA-
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara-
dc.degree.creatorMAESTRA EN CIENCIAS BIOLOGICAS Y AGROPECUARIAS ORIENTACION BIOTECNOLOGIA-
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