Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/81066
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dc.contributor.advisorMendizábal Mijares, Eduardo
dc.contributor.advisorRíos Donato, Nely
dc.contributor.authorVerduzco Navarro, Ilse Paulina
dc.date.accessioned2020-06-08T20:04:24Z-
dc.date.available2020-06-08T20:04:24Z-
dc.date.issued2018-10-19
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/81066-
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.description.abstractLa disponibilidad de agua de buena calidad para diversas actividades es indispensable para el sustento de la vida. Sin embargo, esto se está volviendo cada vez más difícil debido a la contaminación causada por actividades industriales, agrícolas y domésticas (Bhatnagar y Sillanpää, 2009). Varias industrias consumen volúmenes sustanciales de agua al mismo tiempo que utilizan químicos en sus procesos de manufactura, y como resultado, se genera una cantidad considerable de agua contaminada (Crini y Badot, 2008). El colorante rojo 40 es utilizado en la industria alimentaria, farmacéutica y de cosméticos (Piccin et al., 2011). La materia descargada de estas industrias no sólo es estéticamente desagradable sino que también inhibe la penetración de la luz solar, afectando así a los sistemas acuáticos y presentando ciertos riesgos y problemas ambientales (Sanghi y Verma, 2013). La contaminación con colorantes de los cuerpos de agua receptores de las aguas residuales causa efectos extremadamente tóxicos a la vida acuática aún a bajas concentraciones ( Piccin et al., 2011). Entre todos los metales pesados, el cobre es el contaminante más comúnmente desechado en las aguas residuales. Aunque el cobre es un nutriente esencial en cantidades traza, a mayores concentraciones es tóxico para plantas, algas y seres humanos. En ciertos casos, el cobre puede acumularse en el hígado, lo cual causa desordenes gastrointestinales y la larga exposición causa daños hepáticos y renales (Ahmad et al., 2017; Wan Ngah y Fatinathan, 2008). Existen varias tecnologías para la eliminación de colorantes e iones metálicos tales como: precipitación química (Cheng, 2006), separación por membrana (Chougui et al., 2014), extracción líquido-líquido (El-Ashtouky y Fouad, 2015), intercambio iónico (Pathania et al., 2017), biosorción (Kodal y Aksu, 2016), coagulación química y electrocoagulación (Tchamango et al., 2017). Varios de los procesos mencionados no son económicos, y por ello, no son adecuados para ser aplicados en países en desarrollo (Adak et al., 2006). Además, el costo de aplicación de estos procesos impiden a las empresas a adoptar dichas tecnologías (Aksu et al., 2007). La adsorción es un método muy utilizado por su diseño simple, es fácilmente aplicable e implica bajos costos de operación (Ahmad et al., 2017; Crini y Badot, 2008; Zhang et al., 2012). Además, debido a que el proceso de adsorción puede ser selectivo (en esencia, que puede haber una diferencia en la afinidad de la superficie para diferentes componentes), la adsorción ofrece, al menos en principio, un medio relativamente sencillo para purificar, entendiéndose por purificación como la remoción de componentes traza no deseados de una mezcla fluida (Ruthven, 2000). A pesar de que el carbón activado es un adsorbente universal bastante efectivo, su uso generalizado en el tratamiento de aguas se encuentra restringido por su alto costo; es por ello que la adsorción utilizando adsorbentes de bajo costo es un método efectivo y económico para la limpieza de aguas (Bhatnagar y Sillanpää, 2009). En la última década, el estudio de biomateriales ha permitido el desarrollo de nuevos adsorbentes que son amigables con el medio ambiente, tales como derivados de biopolímeros de carragenina, quitosana o alginato (Peretz et al., 2015). Qin et al. (2007) reportaron que el uso combinado de disoluciones de quitosana y alginato de sodio en el tratamiento de aguas residuales conteniendo iones de metales pesados y colorante ácido azul cromo K es más efectivo para la remoción del colorante y los iones de cobre, cadmio, plomo y plata, que cuando se utilizan estos biopolímeros por sí solos.
dc.description.tableofcontentsCONTENIDO ÍNDICE DE FIGURAS……………………………………………………………………… ix ÍNDICE DE TABLAS……………………………………………………………………….. xi INTRODUCCIÓN……………………………………………………………………………. 1 HIPÓTESIS………………………………………………………………………………….. 4 OBJETIVO…………………………………………………………………………………… 4 CAPÍTULO I FUNDAMENTOS DEL PROCESO DE ADSORCIÓN.…...….. 5 1.1 Definición del proceso de adsorción…………………………………..… 5 1.2 Adsorción física y química………………………………………………… 5 1.3 Mecanismos difusionales de adsorción………………………...……….. 6 1.4 Sistemas de adsorción………………………………………………...….. 7 1.5 Adsorción en lecho fijo…………………………………………………….. 8 1.5.1 Operación de un proceso de adsorción en lecho fijo………….. 8 1.5.2 Análisis de un proceso de adsorción en lecho fijo…………….. 10 CAPÍTULO II QUITOSANA………………………………………………………. 11 2.1 Obtención de la quitosana………………………………………………… 11 2.2 Propiedades de la quitosana………………………………………...…… 12 2.3 Modificación de la quitosana……………………………………………… 12 2.4 Sulfonación de la quitosana………………………………………………. 13 2.5 Mecanismo de adsorción del colorante rojo 40 por la quitosana….…. 16 2.6 Mecanismo de adsorción de iones cobre (II) por la quitosana……….. 17 CAPÍTULO III ALGINATO……………………………………………………….... 18 3.1 Obtención del alginato…………………………………………………….. 18 3.2 Estructura del alginato…………………………………………………….. 18 3.3 Entrecruzamiento del alginato……………………………………………. 19 3.4 Formación de complejos alginato-quitosana………..……….…..……... 21 3.5 Complejos metal-alginato…………...………..………………………...… 21 CAPÍTULO IV DESARROLLO EXPERIMENTAL…………………………….... 23 4.1 Obtención del sulfato de quitosana…………………………...…………. 23 4.1.1 Pretratamiento de la quitosana……………………..........……… 23 4.1.2 Sulfonación de la quitosana y purificación……………………… 23 4.2 Caracterización de la quitosana y el sulfato de quitosana………...….. 24 4.2.1 Caracterización de la quitosana y sulfato de quitosana por FTIR………………………………………………………………… 24 4.2.2 Determinación del grado de sulfatación del SQ por análisis elemental…………………………………………………………… 24 4.2.3 Determinación del porcentaje de grupos amino libres de la Q y el SQ mediante titulación potenciométrica.………………...… 24 4.3 Obtención y caracterización de las perlas de alginato, perlas de alginato-Q y perlas de alginato-SQ…………………………………...…. 25 4.3.1 Obtención de las perlas de alginato, perlas de alginato-Q y perlas de alginato-SQ…………………………………………….. 25 4.3.2 Determinación de la composición de los hidrogeles……...…… 26 4.3.3 Determinación del tamaño promedio de las perlas……………. 27 4.3.4 Morfología y superficie de las perlas……………………………. 27 4.4 Pruebas de adsorción en columna…………………………...………….. 27 4.4.1 Preparación de las disoluciones de alimento………..…………. 27 4.4.2 Pruebas de adsorción de colorante rojo 40 en columna…..…. 27 4.4.3 Pruebas de adsorción de iones cobre (II) en columna……..…. 28 CAPÍTULO V RESULTADOS Y DISCUSIÓN…..…………………………….... 29 5.1 Caracterización de la quitosana y el sulfato de quitosana………...….. 29 5.1.1 Caracterización por espectroscopía FTIR………………...……. 29 5.1.2 Caracterización del SQ por análisis elemental…………...……. 30 5.1.3 Caracterización por titulación potenciométrica……………….... 30 5.2 Caracterización de las perlas de alginato, perlas de alginato-Q y perlas de alginato-SQ……………………………………………………... 33 5.2.1 Determinación de la composición de los hidrogeles………...… 33 5.2.2 Determinación del tamaño promedio de las perlas………..….. 33 5.2.3 Morfología y superficie de las perlas..………………………….. 33 5.3 Pruebas de adsorción en columnas empacadas………………………. 37 5.3.1 Pruebas de adsorción de colorante rojo 40 en columnas empacadas…………………………………………………………………. 37 5.3.1.1 Efecto del tipo de adsorbente…………………….…….. 39 5.3.1.2 Efecto de la velocidad de flujo………….……..……….. 45 5.3.1.3 Efecto de la concentración de colorante……..……….. 48 5.3.1.4 Efecto de la cantidad de adsorbente…………….…….. 50 5.3.1.5 Adsorción en columna a pH inicial de 3.0………..…… 52 5.3.1.6 Comparación de datos de adsorción en columna con datos de sistema batch……………………….……….…. 55 5.3.2 Pruebas de adsorción de iones cobre (II) en columnas empacadas…………………………………………………………………. 56 5.3.2.1 Efecto del tipo de adsorbente…………………….…….. 58 5.3.2.2 Efecto de la velocidad de flujo………………..….…….. 61 5.3.2.3 Efecto de la concentración de iones cobre (II)…..….... 64 5.3.2.4 Efecto de la cantidad de adsorbente………….……….. 67 5.3.2.5 Adsorción en columna a pH inicial de 5.9…………..… 71 5.3.2.6 Comparación de la adsorción de iones cobre (II) en perlas de alginato…………………………………………………. 72 5.3.2.7 Comparación de datos de adsorción en columna con datos de sistema batch……………………...……………………. 74 CAPÍTULO VI CONCLUSIONES……………..…..…………………………….... 76 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS………..………..……...…...…………………….... 79
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa-
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectAdsorcion De Iones Cobre Ii
dc.subjectColorante Rojo 40
dc.subjectSistemas Acuosos
dc.subjectPercolacion En Columna
dc.subjectPerlas De Alginatoquitosana
dc.titleADSORCIÓN DE IONES COBRE (II) Y COLORANTE ROJO 40 DE SISTEMAS ACUOSOS MEDIANTE PERCOLACIÓN EN COLUMNA UTILIZANDO PERLAS DE ALGINATO-SULFATO DE QUITOSANA Y PERLAS DE ALGINATO-QUITOSANA
dc.typeTesis de Maestria
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderVerduzco Navarro, Ilse Paulina
dc.coverageGUADALAJARA, JALISCO
dc.type.conacytmasterThesis-
dc.degree.nameMAESTRIA EN CIENCIAS EN QUÍMICA-
dc.degree.departmentCUCEI-
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara-
dc.degree.creatorMAESTRA EN CIENCIAS EN QUÍMICA-
Aparece en las colecciones:CUCEI

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