Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/81046
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dc.contributor.advisorPuebla Pérez., Ana María
dc.contributor.advisorCastillo Romero., Araceli
dc.contributor.authorGutiÉrrez GutiÉrrez, Filiberto
dc.date.accessioned2020-06-08T20:04:17Z-
dc.date.available2020-06-08T20:04:17Z-
dc.date.issued2017-01-05
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/81046-
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.description.abstractGiardia lamblia es el protozoario responsable del mayor número de infecciones intestinales en todo el mundo. Existen diversos fármacos para el tratamiento de la giardiasis, pero con frecuencia causan efectos secundarios. Podofilotoxina es un potente inhibidor del ciclo celular, ha mostrado tener actividad citotóxica contra los trofozoítos de Giardia lamblia, sin embargo, debido a su alta toxicidad sobre células de mamíferos no es posible proponerlo como una nueva alternativa antigiardiásica. Los ciclolignanos de tipo podofilotoxina, burseranina, 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter y acetilpodofilotoxina, mantienen su actividad citotóxica sobre varias líneas cancerígenas y han mostrado una menor actividad citotóxica sobre células de mamífero. En este trabajo se evaluó la actividad antigiardiásica de burseranina, 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, acetilpodofilotoxina y podofilotoxina. Los resultados muestran que todos los lignanos afectan la capacidad de adhesión de los trofozoítos de Giardia, imágenes de microscopía electrónica de barrido revelaron daño en la región caudal, disco ventral, membrana y flagelos, en distintos grado. Solo 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, acetilpodofilotoxina y podofilotoxina inhiben el crecimiento y viabilidad en trofozoítos de Giardia. Por inmunofluorescencia se demostró que burseranina es capaz de inducir el enquistamiento en trofozoítos de Giardia. El análisis de la expresión y distribución de tubulina por inmunofluorescencia, western blot y RT-QPCR sugieren que el mecanismo de acción de 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, acetilpodofilotoxina y podofilotoxina, pudiera ser mediante la unión a tubulina afectando la polimerización de los microtúbulos. Usando la línea celular humana de adenocarcinoma de colon Caco-2 como un modelo de epitelio intestinal, hemos demostrado que de todos los lignanos probados solo acetilpodofilotoxina tiene un pobre efecto citotóxico en este tipo de células, Por acoplamiento molecular demostramos que los lignanos tipo podofilotoxina, probados en este trabajo, reconocen a tubulina como su blanco molecular, se unen en un sitio único; localizado en la interfaz el heterodímero de α y β tubulina. Este sitio difiere ligeramente con el sitio de unión de estos mismos lignanos a tubulina de mamífero. Los datos de la dinámica molecular revelaron que los lignanos reducen el movimiento de los átomos y de los aminoácidos del heterodímero de α y β tubulina de Giardia. Los cálculos de energía libre de unión demostraron una alta afinidad entre los lignanos y el dímero de tubulina, dichos resultados coinciden con los datos experimentales obtenidos para la inhibición de crecimiento. Teniendo en cuenta el alto efecto citotóxico de acetilpodofilotoxina en los trofozoítos de Giardia y su baja toxicidad frente a las células de los mamíferos con un radio de selectividad de 4.1, este compuesto podría considerarse prometedor como un nuevo agente antigiardíasico.
dc.description.tableofcontentsÍndice de contenido 1. INTRODUCCIÓN ........................................................................................... 34 2. ANTECEDENTES .......................................................................................... 37 2.1 Giardiasis ................................................................................................. 38 2.2 Epidemiología .......................................................................................... 39 2.3 Patogenia y fisiopatología ........................................................................ 40 2.4 Ciclo biológico .......................................................................................... 41 2.5 Proceso de adhesión del trofozoíto .......................................................... 43 2.6 Estructura de los trofozoítos .................................................................... 43 2.7 Giardinas ................................................................................................. 46 2.8 Actina ....................................................................................................... 46 2.9 Tubulina ................................................................................................... 47 2.10 Terapéutica antigiardiásica ...................................................................... 49 2.10.1 Nitroimidazoles .................................................................................. 49 2.10.2 Benzoimidazoles ............................................................................... 49 2.10.3 Nitrofuranos ....................................................................................... 49 2.10.4 Acridinas ........................................................................................... 50 2.10.5 Nitrotiazólicos .................................................................................... 50 2.11 Bursera fagaroides ................................................................................... 51 2.12 Lignanos .................................................................................................. 52 2.12.1 Podofilotoxina .................................................................................... 53 2.12.2 Burseranina ....................................................................................... 54 21 2.12.3 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter .................................................... 55 2.12.4. Acetilpodofilotoxina ........................................................................ 56 3. JUSTIFICACION. ........................................................................................... 58 4. OBJETIVOS. .................................................................................................. 59 4.1. Objetivo general. ...................................................................................... 59 4.2. Objetivos específicos. .............................................................................. 59 5. METODOLOGÍA ............................................................................................. 60 5.1 Lignanos tipo podofilotoxina ..................................................................... 60 5.2 Cultivo y mantenimiento de Giardia lamblia ............................................. 60 5.3 Determinación del efecto de burseranina, 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, acetilpodofilotoxina y podofilotoxina en el crecimiento de Giardia lamblia. .............................................................................................................. 60 5.4 Evaluación del efecto de burseranina, 5’-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, acetilpodofilotoxina y podofilotoxina sobre la viabilidad en trofozoítos de Giardia lamblia. .............................................................................................................. 61 5.5 Determinación del efecto de burseranina, 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, acetilpodofilotoxina y podofilotoxina en la capacidad de adhesión de los trofozoítos. ................................................................................................... 61 5.6 Identificación del efecto de burseranina, 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, acetilpodofilotoxina y podofilotoxina en la morfología de los trofozoítos de Giardia por microscopía de barrido. .............................................................. 62 5.7 Determinación del efecto de burseranina, 5-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, acetilpodofilotoxina y podofilotoxina, en la distribución y expresión de tubulina en trofozoítos de Giardia lamblia .......................................................... 62 5.7.1 Inmunofluorescencia ................................................................................ 62 5.7.1. Western blot ............................................................................................. 63 22 5.8 Determinación del efecto de acetilpodofilotoxina en la expresión del gen que codifica para α-tubulina. .............................................................................. 64 5.9 Evaluación del efecto citotóxico de burseranina, acetilpodofilotoxina y 5’-desmetoxi-β-peltatin-α-metileter, sobre células Caco-2 por ensayo de Bromuro de 3-(4,5- dimetiltiazol-2-ilo)-2,5-difeniltetrazol (MTT) ........................................ 65 5.9.1. Cultivo de células Caco-2 y obtención de monocapas celulares confluentes ........................................................................................................ 65 5.10 Determinación del sitio de unión de los lignanos mediante acoplamiento molecular. .......................................................................................................... 66 5.10.1 Modelado por homología de las proteínas α y β tubulina.................................. ............................................................................ 66 5.10.1.1 Identificación y alineamiento de secuencias ................................... 66 5.10.1.2 Modelado por homología ................................................................ 67 5.10.2 Acoplamiento molecular (Docking)...........................................................67 5.11 Dinámica molecular ................................................................................. 69 5.11.2.1 Equilibrio de los complejos ............................................................. 70 5.12 Cálculo de la energía libre de unión de los lignanos ................................ 70 6. RESULTADOS ............................................................................................... 72 6.1. Los lignanos tipo podofilotoxina, aislados de Bursera fagaroides, inhiben el crecimiento de Giardia lamblia. .......................................................................... 72 6.2. Los lignanos tipo podofilotoxina, aislados de Bursera fagaroides, reducen la viabilidad celular en trofozoítos de Giardia lamblia......................................... 73 6.3. Los lignanos tipo podofilotoxina, aislados de Bursera fagaroides, inhiben la adhesión de los trofozoítos de Giardia a superficies inertes .............................. 76 6.4. Los lignanos tipo podofilotoxina, aislados de Bursera fagaroides, afectan la morfología de los trofozoítos de Giardia lamblia ............................................ 77 6.5. Burseranina induce enquistamiento en trofozoítos de Giardia lamblia. .... 79 23 6.6. Los lignanos tipo podofilotoxina aislados de Bursera fagaroides alteran la distribución y expresión de tubulina en trofozoítos de Giardia lamblia ............... 81 6.7. Determinación del efecto de acetilpodofilotoxina en la expresión del gen que codifica para α-tubulina ............................................................................... 85 6.8 Los lignanos tipo podofilotoxina, aislados de Bursera fagaroides, presentan efecto citotóxico en células de adenocarcinoma de colon Caco-2 ........... ............................................................................................................... 86 6.9.1. Modelado por homología ......................................................................... 87 6.9.1.1. Identificación y alineamiento de secuencias ................................... 87 6.9.2. Acoplamiento molecular (docking) ........................................................... 90 6.10 Dinámica molecular ............................................................................... 102 6.11. Cálculo de la energía libre de unión de los ligandos al heterodímero de α-β tubulina ............................................................................................................ 117 6.12 Cálculo de los enlaces rotables durante la dinámica de los lignanos .... 119 6.13 Los lignanos tipo podofilotoxina de Bursera fagaroides, presentan una alta similitud estructural con podofilotoxina ............................................................ 121 7. DISCUSIÓN ................................................................................................. 124 8. CONCLUSIONES ......................................................................................... 129 9. BIBLIOGRAFÍA ............................................................................................ 131
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectEvaluacion Biologica
dc.subjectBurseranina
dc.subjectAcetil Podofilotoxina De Bursera Fagaroides
dc.subjectTrofozoitos De Giardia Lamblia
dc.titleEvaluación biológica de burseranina y acetil podofilotoxina de Bursera fagaroides en trofozoítos de Giardia lamblia
dc.typeTesis de Maestria
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderGutiÉrrez GutiÉrrez, Filiberto
dc.coverageGUADALAJARA, JALISCO
dc.type.conacytmasterThesis-
dc.degree.nameMAESTRIA EN CIENCIAS EN QUIMICA-
dc.degree.departmentCUCEI-
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara-
dc.degree.creatorMAESTRO EN CIENCIAS EN QUIMICA-
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