Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/98113
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dc.contributor.advisorChavez Dagostino, Rosa Maria
dc.contributor.advisorLopez Alcantara, Ruth
dc.contributor.authorZapata, Ana Antonia
dc.date.accessioned2024-03-11T18:42:49Z-
dc.date.available2024-03-11T18:42:49Z-
dc.date.issued2023-07-12
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/98113-
dc.description.abstractEl uso de probióticos se ha propuesto como opción viable para incrementar la capacidad de prevenir enfermedades, dando como resultados mejores parámetros productivos en los hospederos. Los microorganismos que más se han utilizado como probióticos en acuicultura son de las bacterias ácido lácticas (BAL) consideradas no patógenas. El objetivo del presente estudio fue identificar y seleccionar, con base a criterios fenotípicos, metabólicos y funcionales de las BAL propias del tracto gastrointestinal de juveniles de tilapia nilótica (Oreochromis niloticus) para evaluar su potencial uso como probiótico en acuicultura. Así mismo se evaluó el potencial de utilizar encapsulación como para protección y conservación de estos microorganismos. Se aislaron diecisiete BAL del tracto gastrointestinal de juveniles de tilapia, se les realizaron pruebas fenotípicas y metabólicas in vitro para determinar sus propiedades probióticas. Se seleccionaron e identificaros seis cepas (C3, C4, C7, C15, C16 y C25). Después de una segunda clasificación las cepas C3, C7 y C16 mostraron un mejor desempeño. Se sometieron a retos antagónicos y no se observó antagonismo entre las cepas, pero sí contra patógenos seleccionados y aislados de muestras de agua del estanque donde se encontraban los alevines. Las cepas presentaron tolerancia y buena sobrevivencia a pruebas de acidez y sales biliares, una producción de ácido láctico adecuada y una actividad catabólica enzimática considerable a proteínas y carbohidratos. Por lo cual, se consideraron microorganismos con potencial probiótico. Posteriormente las cepas C3, C7 y C16 se sometieron al proceso de encapsulación para evaluar su comportamiento y condiciones en las que estas bacterias son capaces de sobrevivir a la inclusión en la dieta sin ser degradadas en la fase ácida de la digestión in vitro. El encapsulamiento de las cepas se realizó en una matriz de alginato de sodio al 2 % y cloruro de calcio (CaCl) al 1 %, a una densidad celular de ~1x109 UFC (Unidades Formadoras de Colonias). Los encapsulados presentaron una eficiencia de encapsulamiento de 99 a 110 %. Las bacterias aisladas del tracto gastrointestinal de alevines de tilapia (O. niloticus) y que cumplieron con los criterios fenotípicos, metabólicos y funcionales para ser considerados como potenciales probióticos para poder ser usados en acuicultura demostraron ser capaces de resistir al estrés físico y fisiológico como células libres y proliferar para cumplir su función en condiciones de laboratorio, pero además al ser encapsuladas demostraron que pueden sobrevivir al estrés mecánico de elaboración de encapsulado, al periodo largo de almacenamiento y además resistir el proceso de digestión in vitro.
dc.description.tableofcontents1. INTRODUCCIÓN .................................................................................................................1 2. HIPÓTESIS ..........................................................................................................................3 3. OBJETIVO GENERAL .........................................................................................................3 4. OBJETIVOS PARTICULARES ............................................................................................3 5. ANTECEDENTES ................................................................................................................4 5.1. Acuicultura.....................................................................................................................4 5.2. Tilapia nilótica (Oreochromis niloticus).........................................................................4 5.3. Tracto gastrointestinal de los peces .............................................................................5 5.4. Probióticos.....................................................................................................................5 5.5. Selección de probiótico.................................................................................................7 5.6. Mecanismos de acción................................................................................................10 5.7. Bacterias Acido Lácticas.............................................................................................12 5.8. Encapsulados..............................................................................................................12 5.9. Encapsulados en alimentos para acuicultura.............................................................16 6. MATERIALES Y METODOS..............................................................................................19 6.1. Obtención de la muestra.............................................................................................19 6.2. Identificación de Bacterias Ácido Lácticas .................................................................19 6.3. Identificación Bioquímica de BAL ...............................................................................20 6.4. Actividad antagónica ...................................................................................................20 6.5. Prueba de antagonismo cruzado................................................................................20 6.6. Simulación de tolerancia a jugo gástrico y sales biliares ...........................................21 6.7. Análisis de enzimas digestivas ...................................................................................21 6.8. Actividad hemolítica ....................................................................................................22 6.9. Producción de ácido láctico ........................................................................................22 6.10. Activación de las cepas y obtención de la biomasa para encapsular......................22 6.11. Estandarización de la concentración por espectrofotometría de las bacterias acido lácticas................................................................................................................................23 6.12. Preparación de células bacterianas para encapsulación.........................................23 6.13. Encapsulación...........................................................................................................24 6.14. Eficiencia de encapsulación......................................................................................24 6.15. Medición del tamaño de partículas...........................................................................25 6.16. Viabilidad de los probióticos encapsulados durante el almacenamiento ................25 ii 6.17. Viabilidad de cepas acido lácticas encapsuladas en condiciones gástricas simuladas y bilis de tilapia al 10 % ....................................................................................25 7. ANÁLISIS ESTADÍSTICO..................................................................................................26 8. RESULTADOS...................................................................................................................26 8.1. Identificación de Bacterias Ácido Lácticas .................................................................26 8.2. Identificación bioquímica.............................................................................................28 8.3. Actividad antagónica ...................................................................................................29 8.4. Pruebas de antagonismo cruzado ..............................................................................30 8.5. Simulación de tolerancia sales biliares y pH ..............................................................31 8.6. Análisis de las actividades de enzimas ......................................................................32 8.7. Actividad hemolítica ....................................................................................................33 8.8. Producción de ácido láctico ........................................................................................34 8.9. Análisis canónico de correspondencia .......................................................................35 8.10. Estandarización de la concentración por espectrofotometría de las bacterias acido lácticas................................................................................................................................36 8.11. Encapsulación...........................................................................................................38 8.12. Eficiencia de encapsulación......................................................................................38 8.13. Medición del tamaño de partículas...........................................................................39 8.14. Viabilidad de los probióticos encapsulados durante el almacenamiento ................41 8.15. Viabilidad del probiótico encapsulado en condiciones gástricas simuladas y bilis de tilapia al 10%......................................................................................................................42 9. DISCUSIÓN........................................................................................................................44 10. CONCLUSIONES...............................................................................................................50 11. REFERENCIAS..................................................................................................................52
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectBacteria Acido Lacticas
dc.subjectProbioticos
dc.subjectEncapsulacion
dc.subjectAlginato
dc.subjectAcuicultura
dc.subjectTilapia.
dc.titleAislamiento e identificación de una bacteria probiótica del tracto intestinal de tilapia nilótica (Oreochromis niloticus) para el desarrollo de un alimento funcional
dc.typeTesis de Doctorado
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderZapata, Ana Antonia
dc.coveragePUERTO VALLARTA JALISCO
dc.type.conacytdoctoralThesis
dc.degree.nameDOCTORADO EN CIENCIAS EN BIOSISTEMATICA, ECOLOGIA Y MANEJO DE RECURSOS NATURALES Y AGRICOLAS DT
dc.degree.departmentCUCOSTA
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara
dc.degree.creatorDOCTOR EN CIENCIAS EN BIOSISTEMATICA, ECOLOGIA Y MANEJO DE RECURSOS NATURALES Y AGRICOLAS DT
dc.contributor.directorBravo Olivas, Myrna
dc.contributor.codirectorLara Flores, Maurilio
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